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Inseminación artificial del conejo.

Inseminación artificial del conejo.

Inseminación artificial de la hembra en la cría del conejo para carne

La práctica de la inseminación artificial ha representado, en los últimos años, un punto de inflexión en la organización y gestión de granjas industriales de túneles. La reproducción natural sigue siendo una realidad válida, pero solo para granjas muy pequeñas, ya que requiere mayores costos en términos de tiempo, mano de obra y una gran cantidad de machos para la reproducción. Además, la inseminación artificial le permite mantener un estándar de higiene más alto, ya que no solo evita el contacto entre animales, sino que también permite una mayor vigilancia de la salud en las yeguas. En general, la semilla se compra en centros de reproducción de mejoradores seleccionados, incluso si algunos mejoradores han organizado su propio "departamento masculino" para la producción y recolección de la semilla; Este tema se discutirá en un artículo posterior.
Pero vamos a la mujer, el tema de esta discusión. Dado que el conejo es un animal con ovulación inducida, es necesario, durante la inseminación artificial, compensar la falta del estímulo del coito con un estímulo adecuado capaz de desencadenar el mecanismo neuroendocrino responsable de la ovulación. Para hacer esto, hay dos sistemas fundamentales: el primero de tipo farmacológico y el segundo no farmacológico, también llamado bioestimulación. Las bioestimulaciones todavía se están estudiando debido a los datos discordantes reportados por los diversos autores, pero están destinadas a establecerse especialmente en la cría de animales biológicos donde el uso de drogas está prohibido. A esta gran familia pertenecen el "enrojecimiento" (suministro adicional de energía y sustancias proteicas en la ración), "el efecto masculino" (estimulación olfativa debido a las feromonas producidas por el hombre), "el efecto de la luz" (aumento en el fotoperíodo que afectaría positivamente en el rendimiento reproductivo), frotando los genitales femeninos con el catéter (para simular el coito), y finalmente algunas manipulaciones como la separación de la yegua de cría de la cría y el cambio de la jaula. Los tratamientos farmacológicos, de origen esencialmente hormonal, son mucho más prácticos, efectivos y estandarizados. Por ejemplo, la GnRH (hormona liberadora de gonadotropina) o análogos sintéticos administrados por vía intramuscular en el momento de la inseminación determinan, a nivel pituitario, la liberación de LH (u hormona luteinizante) responsable del brote de folículos preovulatorios y, por lo tanto, de la ovulación. Algunos protocolos prevén el uso de PMSG (Gonadotropina sérica de yegua preñada o gonadotropina sérica de yegua preñada) con efecto estimulante del folículo (crecimiento y maduración del folículo), que se administrará 48-72 horas antes de la inseminación, lo que parece ser efectivo especialmente en mujeres lactancia materna incluso si, en su uso, no todos los autores están de acuerdo porque, según algunos, podría inducir una respuesta inmune con la producción de anticuerpos anti-PMSG: por lo tanto, se recomienda un uso moderado. La asociación de PMSG y hCG (gonadotropina coriónica humana) también parece ser efectiva. Finalmente, un último protocolo prevé el uso de prostaglandinas (PGF2α) utilizadas para la sincronización del estro que se administrará 64 horas antes de la inseminación artificial. Además, para una mayor probabilidad de éxito en la inseminación artificial y en la elección del protocolo para la inducción de la ovulación, es necesario tener en cuenta algunos factores relacionados con el rendimiento reproductivo. En primer lugar, el orden de nacimiento: receptividad, fertilidad y prolificidad parecen ser mejores en nulíparos y pluríparos y un poco más escasos en primíparos, especialmente si están en la fase de lactancia; Todo esto se debe al antagonismo hormonal que se crea entre la reproducción y la lactancia a lo que se agrega el déficit de energía que ocurre en sujetos jóvenes que aún no han terminado el desarrollo del cuerpo, agravado por la menor capacidad de ingerir durante el embarazo debido a del tamaño del feto útero. La fase reproductiva también tiene una importancia decisiva precisamente por las razones antes mencionadas: de hecho, la prolactina (hormona necesaria para la producción y secreción de leche) y la progesterona (hormona esencial para el embarazo) ejercen un efecto inhibidor entre sí. . La receptividad sexual es otro "detalle" que no debe subestimarse. Un animal receptivo tiene mayor frecuencia de ovulación, fertilidad y prolificidad que un animal no receptivo. Esta receptividad es mayor en el período posparto inmediato y luego disminuye durante unos días (poco menos de 1 semana) y finalmente se establece en valores aceptables gracias a la maduración de los folículos y la producción de estrógenos. Ahora llegamos a la técnica: ¿cómo se insemina la yegua? En primer lugar, esta práctica debe confiarse a personal capacitado y calificado, y llevarse a cabo con habilidad, delicadeza y paciencia, bajo pena de causar daños más o menos graves a los animales. La superficie de trabajo esencial consiste en un contenedor de tubos para la yegua, los tubos que contienen el semen y un contenedor para los catéteres. Un plan de trabajo hecho "en casa" es visible en la Foto 1.

Foto 1: Plan de inseminación - Foto 2: Inseminación de una yegua (foto C. Papeschi)

La yegua debe introducirse suavemente en el recipiente del tubo con la cabeza hacia el fondo (Foto 2). La inseminación se lleva a cabo introduciendo el esperma profundamente en la vagina a través de un catéter de vidrio de plástico desechable o (que debe esterilizarse antes de volver a usar) de una longitud que varía de 25 a 28 cm con un diámetro de 3 mm y termina en una punta curva y redondeada ( Foto 3), para evitar traumatismos y lesiones graves.
Al final del catéter hay una pequeña jeringa. La dosis inseminante consiste en una cantidad de material espermático que varía de acuerdo con la dilución y concentración de espermatozoides.
En general, el líquido inoculado es igual a 0,5 ml y debe contener al menos 10 millones de espermatozoides vivos y viables.
El operador toma la cola de la yegua sosteniéndola entre los dedos índice y medio, tirando ligeramente hacia arriba (siempre suavemente) y empujando la abertura vulvar con el pulgar hacia abajo. Al mismo tiempo, se introducirá el catéter con la punta apuntando hacia la parte posterior del conejo, es decir, hacia la parte superior. Después de aproximadamente 3 cm habrá una dificultad para continuar la penetración debido a la presencia de un pliegue vaginal colocado cranealmente en la abertura de la uretra: se realizará una rotación de 180 ° de la punta del catéter para evitar el meato urinario y continuará hasta el final del vagina. El material fertilizante debe depositarse en el fondo de la vagina en los dos cervices (vagina craneal). Un operador con buenas prácticas puede incluso inseminar 60 conejos por hora.
En conclusión: la inseminación artificial es una práctica, hasta la fecha, bastante conveniente tanto por el bajo costo de la semilla en relación con los costos de funcionamiento de un parque de machos, como por el mayor porcentaje de hembras impregnadas y finalmente para ahorrar tiempo y labor.

Foto 3 - Catéter para inseminación artificial (foto C. Papeschi)

Anatomía y fisiología del conejo macho.

El macho alcanza, en promedio, la madurez sexual alrededor de 5-5.5 meses de vida. La producción y emisión de la semilla tiene lugar, en el conejo como en todos los demás mamíferos, a través del sistema genital, compuesto por los siguientes órganos fundamentales: los testículos, el pene, las glándulas accesorias y el tracto genital. Los testículos son el sitio de producción de esperma y son órganos ovales iguales, divididos en logias que contienen los túbulos seminíferos. Dentro de estos túbulos encontramos las células germinales responsables de la producción de esperma y las células de Sertoli que brindan apoyo y nutrición a las anteriores, mientras que en el tejido intersticial hay células de Leydig que producen las hormonas (andrógenos) esenciales para la síntesis de gametos. masculino. Los túbulos seminíferos fluyen hacia la red testicular que a su vez se vierte en el epidídimo, donde los espermatozoides se acumulan y maduran. La funcionalidad testicular está regulada por un complejo mecanismo hormonal que actúa sobre el sistema hipotalámico-pituitario-gonadal y que conducirá, dentro de 45-50 días, a la formación de espermatozoides con poder fertilizante a partir de espermatogonias (células madre) a través de un proceso de división, maduración y capacitación que terminará con la acumulación de esperma en el epidídimo listo para ser eyaculado. La producción diaria promedio de esperma por animal es de alrededor de 150-200 millones. Durante la eyaculación, los espermatozoides se mezclan con otras sustancias (azúcares, enzimas, hormonas y soluciones de electrolitos) secretadas por vesículas seminales y próstata y esenciales para la protección, nutrición y transporte. El fluido seminal así compuesto se depositará en la vagina durante la inseminación artificial (o montaje natural). En este punto, los espermatozoides tendrán que subir al tracto genital femenino gracias al movimiento de su propia cola, pero también de las contracciones uterovaginales y las células ciliadas. Durante este viaje, los espermatozoides se someterán a un proceso de selección debido a la aspereza del viaje dentro del tracto genital femenino y solo una pequeña fracción (aproximadamente el 10%) de estos podrá alcanzar el oviducto y fertilizar el gameto femenino.
El pene u órgano copulatorio carece de glande, retroverso y cerrado, en reposo, en un pliegue de piel, mientras que durante la erección asumirá una posición horizontal y el tamaño de 3-4 cm.

Cría de machos

Los machos jóvenes criados para la producción de semillas no deben ser alimentados con raciones particularmente energéticas hasta al menos el inicio de la producción. En las primeras etapas es mejor alimentar un alimento rico en fibra. Posteriormente, una vez en producción, será necesario aumentar el nivel de energía de la ración de acuerdo con el número de retiros a realizar. Las jaulas en las que se alojarán los machos deben estar diseñadas de tal manera que garanticen la comodidad del animal y del operador, por lo tanto, serán más espaciosas que las jaulas de cría y deben tener una abertura que no impida las operaciones de recolección. Las habitaciones de la vivienda deben garantizar un microclima adecuado con una temperatura de 18-20 ° C, una humedad relativa del 70% y un fotoperíodo de 8-10 horas de luz. Las jaulas deben limpiarse y desinfectarse periódicamente para evitar la contaminación microbiana de los genitales y debe prestarse especial atención a los sujetos recién comprados que deben pasar un período de cuarentena de forma aislada antes de ser alojados dentro de la granja.

Eliminación de semillas

La recolección de semen debe realizarse de forma moderada al menos hasta que el testículo haya alcanzado su desarrollo completo (8-9 meses). La recolección de semen se lleva a cabo con la ayuda de vaginas artificiales en vidrio o plástico cubiertas internamente por una vaina de látex para formar un espacio vacío entre la pared externa de la vagina y la vaina. Esta cavidad, por medio de una pequeña válvula, se llenará con agua a una temperatura de 40-42 ° C para simular la temperatura de los genitales de la hembra en el momento del apareamiento. En un extremo de la vagina artificial se colocará un tubo de ensayo graduado esencial para la recolección del semen eyaculado por el hombre a través de la abertura colocada en el extremo opuesto del instrumento. El muestreo se realiza insertando una mano que contiene la vagina artificial en la jaula y dejando que el macho "se acople" en ella. Los machos jóvenes e inexpertos pueden ser reacios a donar semen y, en este caso, es posible remediar el problema insertando una hembra en la jaula mientras se mantiene la vagina artificial entre las patas traseras de este último.
El volumen de eyaculación fluctúa, en promedio entre 0.6-2 ml / cabeza con una concentración promedio de 180-190 millones de espermatozoides, una vitalidad de aproximadamente 70% y un pH entre 7.1-7.3.
Debido a la posible presencia de bacterias contaminantes como Chlamidie, Staphylococci, Streptococci y Pasteurella, se recomienda realizar pruebas microbiológicas en la semilla al menos 2-3 veces al año.
La semilla tomada debe ser privada del tapón mucoso, debe evaluarse y usarse entera o diluida según las necesidades.
El semen se evalúa con la ayuda de un microscopio con un aumento de 100-200x para evaluar tanto el movimiento general (100x) como el movimiento de los espermatozoides individuales y las anomalías morfológicas de estos últimos a una temperatura de aproximadamente 37 ° C. Si la semilla se usa entera, se puede dividir en dosis de 0.2-0.3 ml y se debe usar en un par de horas. Lo más común es que la semilla se diluya 1:10 y como diluyentes puede usar: solución fisiológica (usar en unas pocas horas) o TRIS BUFFER (Tris amino metano + ácido cítrico monohidrato + fructosa + agua destilada estéril) que debe usarse dentro de las 48 horas .

Dr. Cristiano Papeschi - Universidad de Tuscia (VT)

Foto 4 - Vagina artificial (foto C. Papeschi)

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Vídeo: inseminacion en conejos (Enero 2021).